细胞自噬检测试剂盒流怎么检测

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自噬检测方面的问题
大家好!我刚刚开始自噬方面的实验,请教大家:
我用不同浓度的药物,定性和定量检测24h时-Hela细胞自噬发生情况。根据文献的查阅情况,开始应用MDC染色在荧光显微镜下观察;另一方面用流式细胞仪定量检测MDC阳性比例。问题是:
1、最初两次荧光显微镜下检测,和对照组相比,给药组的荧光现象更明显,可是最近做总是看到一片淡绿色,看不到每个细胞的轮廓及荧光情况?
2、流式检测时,阳性Rapamycin对照总是不好,有时甚至和阴性图形类似?
我的怀疑是:
1、MDC染色方法操作处理中的问题。国内一些文献使用的方法不一,吖啶橙染的也不少。MDC有的用爬片,有的没用,具体写的不够详细。我没有使用爬片,给药24h后,PBS清洗,用MDC六孔板内染色孵育15min后直接进行的荧光镜检。因为前两次有比较明显的图,这样操作过程简单,觉得可以。可是,最近却观察不到了,而且流式的结果图,阳性总是不明显。
2、试剂。我按照文献和说明书处理的MDC和Rapamycin,终浓度0.05mmol/L和1umol/L,试剂使用前一天配置。
4、操作。流式上机之前,MDC孵育后处理就是清洗,消化,离心(2次),重悬,上机。
开始觉得挺简单的,荧光检测比较明显,就做了流式看看,但阳性参照却不明显,很纳闷。大家觉得是怎么回事,有什么建议么?
这问题我已经有一定的答案了
主要是MDC使用的问题,孵育时间可以适当延长;荧光显微镜调节不当。
另外,我们和别人的药物不同,引起自噬的程度不同,做出的结果自然不能完全参考别人文献的。
祝:实验顺利!
:hand:楼主,您好,能不能够发一下MDC使用的参考文献给我,我想知道一下MDC怎么配制及使用。
能用于切片吗,
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扫描下载送金币自噬的检测方法及评述--《现代生物医学进展》2012年09期
自噬的检测方法及评述
【摘要】:细胞自噬是广泛存在于真核细胞内的一种降解途径,在机体发育过程中、在生理和病理状况下都起重要作用。近年,自噬成为热点研究领域,但少有论文深入分析不同检测方法得来的数据在研究中的不同意义,说明不同检测方法所获的结果的优缺点和适用条件。本文拟对哺乳动物细胞自噬检测方法进行归类、介绍及评述,旨在为研究工作中自噬检测方法的选择和研究结果的解释起帮助作用。
【作者单位】:
【基金】:
【分类号】:R329【正文快照】:
前言细胞自噬是广泛存在于真核细胞内的一种溶酶体依赖的降解途径,胞内损伤的蛋白质和细胞器通过自噬作用被降解,产生的氨基酸、脂肪酸等降解产物再被细胞重新利用[1]。长因子缺乏、氧自由基、DNA损伤等应激皆可诱导自噬[2-4]。自噬是一个高度动态的过程,主要包括两个步骤:先
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自噬(Autophagy),或称自体吞噬,是一个涉及到细胞自身结构通过溶酶体机制而被分解的过程,该过程是一个受到紧密调控的步骤,帮助细胞产物在合成、降解以及接下来的循环中保持一个平衡状态。“自噬”一词是由比利时化学家克里斯汀o德o迪夫在1963年创造的。90年代酵母的研究人员通过识别自噬相关基因,从而推动了自噬研究的开展。日本科学家大隅良典因对“细胞自噬机制的发现”,获得了2016年度的诺贝尔生理学或医学奖。在生物体内发育、分化、环境胁迫和肿瘤发生中具有重要的意义。
目前已有研究证明多种因素能够诱导细胞发生自噬,如饥饿、生长因子缺乏、微生物感染、细胞器损伤、蛋白质折叠错误或聚集、DNA损伤、放疗、化疗等。但是关于自噬信号的传递,现有的研究只明确了几种信号通路,包括抑制类和激活类,但具体的机制尚在研究中。
细胞接受自噬诱导信号后,在胞浆的某处形成一个扁平的类似“脂质体”样的膜结构,称为Phagophore。随着Phagophore不断延伸,将胞浆中的细胞器等成分,全部包裹住成为密闭的结构,称为“自噬体(autophagosome)”。自噬体形成后,可与溶酶体融合,自噬体中的内容物随即被降解,产物(氨基酸、脂肪酸等)被输送到胞浆中,供细胞重新利用,而残渣或被排出细胞外或滞留在胞浆中。
北京安必奇生物是美国Creative Bioarray公司的独家代理,拥有国际一流的研究人员组成的实验团队,依托国际化的先进技术及检测平台,能够为国内的科研工作者提供优质的细胞自噬检测服务。正常培养的细胞经自噬诱导剂或抑制剂干预后,即可对自噬过程进行观察和检测。安必奇生物能够提供的检测策略包括以下几种:
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